Colección de Microorganismos con Interés en Nutrición Animal (CMINA)

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dc.audienceTécnico
dc.audienceProfesional
dc.audienceInvestigador
dc.coverageCentro de Investigación Palmira
dc.coverageCentro de Investigación Tibaitatá
dc.coverageColombia
dc.creatorOvalle Másmela, Juan Camilo
dc.creatorBotero Rute, Lina Marcela
dc.creatorHerrera León, Rocío Fenney
dc.creatorRodríguez Villamizar, Fernando
dc.creatorJiménez Sabogal, Hugo Rodolfo
dc.date2022-04-08T16:28:13Z
dc.date2022-04-08T16:28:13Z
dc.date2021-11-20
dc.date2021
dc.date.accessioned2026-06-27T05:04:43Z
dc.descriptionLa CMNIA conserva 164 accesiones de bacterias, divididas en dos grandes gru-pos: el primero está conformado por bacterias anaerobias aisladas del tracto gastrointestinal de algunos herbívoros domésticos y silvestres, entre los cuales se encuentran razas de bovinos criollos, chigüiro, danta y agutí; el segundo grupo corresponde a bacterias ácido-lácticas aisladas de ensilajes de avena y maíz del altiplano cundiboyacense. Adicionalmente, la colección cuenta con 4 accesiones de hongos anaerobios ruminales. Los microorganismos contenidos en esta colección son nativos y de interés pecuario, principalmente, y esta fue conformada a partir de colectas realizadas en el país, por lo que representan una riqueza genética de la diversidad microbiana colombiana. Con el fin de conservar esta diversidad y evitar su erosión y pérdida, se requiere la implementación de técnicas de conservación a largo plazo, efectivas y a bajo costo, que garanticen la preservación de las características genéticas y fisiológicas de los microorganismos que la componen.
dc.descriptionCorporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA
dc.formatapplication/pdf
dc.formatapplication/pdf
dc.identifierhttp://hdl.handle.net/20.500.12324/37078
dc.identifierreponame:Biblioteca Digital Agropecuaria de Colombia
dc.identifierrepourl:https://repository.agrosavia.co
dc.identifierinstname:Corporación colombiana de investigación agropecuaria AGROSAVIA
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/123456789/45262
dc.languagespa
dc.publisherCorporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA
dc.relation126
dc.relation164
dc.relationAkin, D. E., & Borneman, W. S. (1990). Role of rumen fungi in fiber degradation. Journal of Dairy Scien-ce, 73(10), 3.023-3.032. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(90)78989-8
dc.relationArchibald, F. S., & Fridovich, I. (1981). Manganese, superoxide dismutase, and oxygen tolerance in some lactic acid bacteria. Journal of Bacteriology, 146(3), 928-936. https://doi.org/10.1128/jb.146.3.928-936.1981
dc.relationAriyapitipun, T., Mustapha, A., & Clarke, A. D. (1999). Microbial shelf life determination of vacuum-pac-kaged fresh beef treated with polylactic acid, lactic acid, and nisin solutions. Journal of Food Protection, 62(8), 913-920. https://doi.org/10.4315/0362-028X-62.8.913
dc.relationDomingues Millen, D., De Beni Arrigoni, M., & Dias Lauritano Pacheco, R. (eds.). (2016). Rumenology. Springer. https://doi.org/10.1007/978-3-319-30533-2
dc.relationDrinan, D. F., Tobin, S., & Cogan, T. M. (1976). Citric acid metabolism in hetero- and homofermenta-tive lactic acid bacteria. Applied and Environmental Microbiology, 31(4), 481-486. https://doi.org/10.1128/aem.31.4.481-486.1976
dc.relationEdwards, J. E., McEwan, N. R., Travis, A. J., & Wallace, R. J. (2004). 16S rDNA library-based analy-sis of ruminal bacterial diversity. Antonie van Leeuwenhoek, 86(3), 263-281. https://doi.org/10.1023/B:ANTO.0000047942.69033.24
dc.relationFouts, D. E., Szpakowski, S., Purushe, J., Torralba, M., Waterman, R. C., MacNeil, M. D., Alexander, L. J., & Nelson, K. E. (2012). Next generation sequencing to define prokaryotic and fungal diversity in the bovine rumen. PLoS ONE, 7(11), artículo e48289. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0048289
dc.relationFox, P. F., Guinee, T. P., Cogan, T. M., & McSweeney, P. L. H. (2017). Fundamentals of cheese science(2.a ed.). Springer Nature. https://doi.org/10.1007/978-1-4899-7681-9
dc.relationFreire, J. R. (1999). Conservación de cultivos de rhizobios. Revista Latinoamericana de Microbiología, 41(1), 35-45
dc.relationHungate, R. E. (1969). A roll tube method for cultivation of strict anaerobes. En J. R. Norris, & D. W. Ribbons (eds.), Methods in microbiology (vol. 3, parte B, pp. 117-132). Academic Press. https://doi.org/10.1016/S0580-9517(08)70503-8
dc.relationJami, E., White, B. A., & Mizrahi, I. (2014). Potential role of the bovine rumen microbiome in modulating milk composition and feed efficiency. PLoS ONE, 9(1), artículo e85423. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0085423
dc.relationJoshi, A., Lanjekar, V. B., Dhakephalkar, P. K., Callaghan, T. M., Griffith, G. W., & Dagar, S. S. (2018). Liebe-tanzomyces polymorphus gen. et sp. nov., a new anaerobic fungus (Neocallimastigomycota) isola-ted from the rumen of a goat. MycoKeys, 40, 89-110. https://doi.org/10.3897/mycokeys.40.28337
dc.relationKandler, O. (1983). Carbohydrate metabolism in lactic acid bacteria. Antonie van Leeuwenhoek, 49(3), 209-224. https://doi.org/10.1007/BF00399499
dc.relationKrause, D. O., Denman, S. E., Mackie, R. I., Morrison, M., Rae, A. L., Attwood, G. T., & McSweeney, C. S. (2003). Opportunities to improve fiber degradation in the rumen: Microbiology, ecology, and geno-mics. fems Microbiology Reviews, 27(5), 663-693. https://doi.org/10.1016/S0168-6445(03)00072-X
dc.relationMcSweeney, C. S., Blackall, L. L., Collins, E., Conlan, L. L., Webb, R. I., Denman, S. E., & Krause, D. O. (2005). Enrichment, isolation and characterisation of ruminal bacteria that degrade non-protein amino acids from the tropical legume Acacia angustissima. Animal Feed Science and Technolo-gy, 121(1-2), 191-204. https://doi.org/10.1016/j.anifeedsci.2005.02.018
dc.relationRezaeian, M., Beakes, G. W., & Parker, D. S. (2004). Methods for the isolation, culture and assessment of the status of anaerobic rumen chytrids in both in vitro and in vivo systems. Mycological Re-search, 108(10), 1.215-1.226. https://doi.org/10.1017/S0953756204000917
dc.relationRodríguez, F., Martín, E., Laverde, C., Mayorga, O. L., Carvajal, F., Rodríguez, T. A., & Rodríguez, J. A. (eds.). (2011). Manual de laboratorio para el estudio de microorganismos anaerobios obligados. Corporación Colombiana de Investigación Agropecuaria (Corpoica). https://repository.agrosavia.co/bitstream/handle/20.500.12324/13270/73338_58163.pdf?sequence=1&isAllowed=y
dc.relationSánchez Leal, L. C., & Corrales Ramírez, L. C. (2005). Congelación bacteriana: factores que intervie-nen en el proceso. Nova, 3(3), 109-113. https://doi.org/10.22490/24629448.23
dc.relationScott, R. I., Yarlett, N., Hillman, K., Williams, A. G., Lloyd, D., & Williams, T. N. (1983). The presence of oxygen in rumen liquor and its effects on methanogenesis. Journal of Applied Bacteriology, 55(1), 143-149. https://doi.org/10.1111/j.1365-2672.1983.tb02658.x
dc.relationSettanni, L., & Moschetti, G. (2010). Non-starter lactic acid bacteria used to improve cheese quality and provide health benefits. Food Microbiology, 27(6), 691-697. https://doi.org/10.1016/j.fm.2010.05.023
dc.relationSpiegel, C. A. (1991). Bacterial vaginosis. Clinical Microbiology Reviews, 4(4), 485-502. https://doi.org/ 10.1128/cmr.4.4.485
dc.relationWindham, W. R., & Akin, D. E. (1984). Rumen fungi and forage fiber degradation. Applied and Environ-mental Microbiology, 48(3), 473-476. https://doi.org/10.1128/AEM.48.3.473-476.1984
dc.relationWubah, D. A., & Kim, D. S. H. (1996). Chemoattraction of anaerobic ruminal fungi zoospores to selected phenolic acids. Microbiological Research, 151(3), 257-262. https://doi.org/10.1016/S0944-5013(96)80022-X
dc.relationXue, M., Sun, H., Wu, X., Guan, L. L., & Liu, J. (2018). Assessment of rumen microbiota from a large dairy cattle cohort reveals the pan and core bacteriomes contributing to varied phenotypes. Applied and Environmental Microbiology, 84, artículo e00970-18. https://doi.org/10.1128/AEM.00970-18
dc.relationZamora Rodríguez, L. M. (2003). Aislamiento, identificacion y conservacion de cultivos de bac-terias lácticas antagonistas de microbiota contaminante de sangre de matadero [tesis doctoral, Universidad de Girona]. https://www.tdx.cat/bitstream/handle/10803/7925/Tlzr.pdf;jsessionid=E753D716FF66DD25AA91BA0C211C598B?sequence=4
dc.relation[Conservación y manejo de la diversidad microbiana en los bancos de germoplasma para la alimentación y la agricultura en Colombia](http://hdl.handle.net/20.500.12324/36935)
dc.rightsAttribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International
dc.rightshttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
dc.subjectGenética y mejoramiento animal - L10
dc.subjectColecciones de material genético
dc.subjectRecursos genéticos
dc.subjectRumen
dc.subjectAislamiento
dc.subjectGanadería y especies menores
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_36739
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_3218
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_6693
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_37744
dc.thumbnailhttps://repository.agrosavia.co/bitstreams/cc255366-9444-4dbb-a088-43d5abc0df7b/download
dc.thumbnailhttps://repository.agrosavia.co/bitstreams/9b5bff98-bbed-41fb-a6e7-f4054d37d7d6/download
dc.titleColección de Microorganismos con Interés en Nutrición Animal (CMINA)
dc.typeCapítulo

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