Colección de Microorganismos con Interés en Biofertilizantes (CMIB)

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dc.audienceTécnico
dc.audienceProfesional
dc.audienceInvestigador
dc.coverageCentro de Investigación Palmira
dc.coverageCentro de Investigación Tibaitatá
dc.coverageColombia
dc.creatorCriollo Campos, Paola Jimena
dc.creatorPérez Moncada, Urley Adrián
dc.creatorEstrada Bonilla, Germán Andrés
dc.creatorBonilla Buitrago, Ruth Rebeca
dc.date2022-04-08T15:30:58Z
dc.date2022-04-08T15:30:58Z
dc.date2021-11-20
dc.date2021
dc.date.accessioned2026-06-27T05:20:59Z
dc.descriptionLa CMIB está conformada por 353 accesiones bacterianas y 25 accesiones de hongos formadores de micorrizas arbusculares (hfma). Para su mantenimien-to a través del tiempo, se han realizado estudios con diferentes técnicas de preservación a largo plazo, estableciendo protocolos que permiten una mayor estabilidad en la viabilidad y actividad biológica de las cepas de microorganis-mos (Rojas-Tapias et al., 2012). La mayoría de los métodos de conservación y mantenimiento de los materiales empleados en la actualidad requieren sis-temas de almacenamiento sofisticados que implican grandes inversiones de dinero y material (Rojas-Tapias et al., 2013); sin embargo, son metodologías necesarias para garantizar el buen funcionamiento y la preservación del ger-moplasma. Adicionalmente, se bioprospecta que los microorganismos que conforman la colección sean utilizados como principios activos para el desa-rrollo de inoculantes biológicos. Los mecanismos directos se relacionan con la solubilización de P, la fijación de N, la producción de fitohormonas de tipo auxinas y giberelinas o la regulación de la producción de hormonas por parte de la planta (Ahmad et al., 2008; Vimal et al., 2017), y los mecanismos indirectos están relacionados con la resistencia sistémica inducida y la producción de sideróforos, de quiti-nasas, de antibióticos y de acc desaminasa (Goswami et al., 2016; Jeyanthi & Kanimozhi, 2018; Singh, 2018).El uso de pgpb representa una alternativa ecológica sustentable (Obando Castellanos et al., 2010), por lo que se considera ideal para incrementar el rendimiento de las plantas de interés agroindustrial. Las pgpb participan di-rectamente en los ciclos biogeoquímicos, mediante el aumento de la dis-ponibilidad de nutrientes. Además, indirectamente, pueden contribuir con la inducción de la resistencia sistémica a fitopatógenos, el control biológico de enfermedades y la producción de antibióticos y sideróforos (López-Ortega et al., 2013; Pii et al., 2015; Sanchez López et al., 2014). Por lo anterior, es necesario investigar la respuesta de diferentes especies de plantas a la inoculación con hfma, en diferentes sustratos, para obtener inóculos de calidad
dc.descriptionCorporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA
dc.formatapplication/pdf
dc.formatapplication/pdf
dc.identifierhttp://hdl.handle.net/20.500.12324/37076
dc.identifierreponame:Biblioteca Digital Agropecuaria de Colombia
dc.identifierrepourl:https://repository.agrosavia.co
dc.identifierinstname:Corporación colombiana de investigación agropecuaria AGROSAVIA
dc.identifier.urihttp://hdl.handle.net/123456789/53754
dc.languagespa
dc.publisherCorporación colombiana de investigación agropecuaria - AGROSAVIA
dc.relation67
dc.relation88
dc.relationAhmad, F., Ahmad, I., & Khan, M. S. (2008). Screening of free-living rhizospheric bacteria for their multiple plant growth promoting activities. Microbiological Research, 163(2), 173-181. https://doi.org/10.1016/j.micres.2006.04.001
dc.relationAngus, J. F., & Grace, P. R. (2017). Nitrogen balance in Australia and nitrogen use efficiency on Austra-lian farms. Soil Research, 55(6), 435-450. https://doi.org/10.1071/SR16325
dc.relationBonfante, P., & Genre, A. (2008). Plants and arbuscular mycorrhizal fungi: An evolutionary-deve-lopmental perspective. Trends in Plant Science, 13(9), 492-498. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2008.07.001
dc.relationGaby, J. C., & Buckley, D. H. (2011). A global census of nitrogenase diversity. Environmental Microbio-logy, 13(7), 1.790-1.799. https://doi.org/10.1111/j.1462-2920.2011.02488.x
dc.relationxGarcia, K., Doidy, J., Zimmermann, S. D., Wipf, D., & Courty, P.-E. (2016). Take a trip through the plant and fungal transportome of mycorrhiza. Trends in Plant Science, 21(11), 937-950. https://doi.org/10.1016/j.tplants.2016.07.010
dc.relationGerdemann, J. W., & Nicolson, T. H. (1963). Spores of mycorrhizal Endogone species extracted from soil by wet sieving and decanting. Transactions of the British Mycological Society, 46(2), 235-244. https://doi.org/10.1016/s0007-1536(63)80079-0
dc.relationGirma, G. (2015). Microbial bioremediation of some heavy metals in soils: An updated review. Egyptian Academic Journal of Biological Sciences, G. Microbiology, 7(1), 29-45. https://doi.org/10.21608/eajbsg.2015.16483
dc.relationGlickmann, E., & Dessaux, Y. (1995). A critical examination of the specificity of the salkowski reagent for indolic compounds produced by phytopathogenic bacteria. Applied and Environmental Mi-crobiology, 61(2), 793-796. https://doi.org/10.1128/aem.61.2.793-796.1995
dc.relationGoswami, D., Thakker, J. N., & Dhandhukia, P. C. (2016). Portraying mechanics of plant growth promo-ting rhizobacteria (pgpr): A review. Cogent Food & Agriculture, 2(1), artículo 1127500. https://doi.org/10.1080/23311932.2015.1127500
dc.relationJin, H., Germida, J. J., & Walley, F. L. (2013). Impact of arbuscular mycorrhizal fungal inoculants on subsequent arbuscular mycorrhizal fungi colonization in pot-cultured field pea (Pisum sativum L.). Mycorrhiza, 23(1), 45-59. https://doi.org/10.1007/s00572-012-0448-9
dc.relationLloyd, D. H. (1994). The preservation and maintenance of living fungi, 2nd edition, D. Smith and A. H. S. Onions. Veterinary Dermatology, 5(4). https://doi.org/10.1111/j.1365-3164.1994.tb00033.x
dc.relationLópez-Ortega, M. D. P., Criollo-Campos, P. J., Gómez-Vargas, R. M., Camelo-Runsinque, M., Estra-da-Bonilla, G., Garrido-Rubiano, M. F., & Bonilla-Buitrago, R. (2013). Characterization of diazotro-phic phosphate solubilizing bacteria as growth promoters of maize plants. Revista Colombiana de Biotecnología, 15(2), 115. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v15n2.36303
dc.relationMoreno-Galván, A. E., Cortés-Patiño, S., Romero-Perdomo, F., Uribe-Vélez, D., Bashan, Y., & Bonilla, R. R. (2020). Proline accumulation and glutathione reductase activity induced by drought-tolerant rhizobacteria as potential mechanisms to alleviate drought stress in Guinea grass. Applied Soil Ecology, 147, artículo 103367. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2019.103367
dc.relationMurphy, J., & Riley, J. P. (1962). A modified single solution method for the determination of phosphate in natural waters. Analytica Chimica Acta, 27, 31-36. https://doi.org/10.1016/S0003-2670(00)88444-5
dc.relationNgumbi, E., & Kloepper, J. (2016). Bacterial-mediated drought tolerance: Current and future prospects. Applied Soil Ecology, 105, 109-125. https://doi.org/10.1016/j.apsoil.2016.04.009
dc.relationRojas-Tapias, D., Ortiz-Vera, M., Rivera, D., Kloepper, J., & Bonilla, R. (2013). Evaluation of three methods for preservation of Azotobacter chroococcum and Azotobacter vinelandii. Universitas Scientia-rum, 18(2), 129-139. https://doi.org/10.11144/Javeriana.SC18-2.etmp
dc.relationomero-Perdomo, F., Abril, J., Camelo, M., Moreno-Galván, A., Pastrana, I., Rojas-Tapias, D., & Boni-lla, R. (2017). Azotobacter chroococcum as a potentially useful bacterial biofertilizer for cotton (Gossypium hirsutum): Effect in reducing N fertilization. Revista Argentina de Microbiología, 49(4), 377-383. https://doi.org/10.1016/j.ram.2017.04.006
dc.relationSanchez López, D. B., García Hoyos, A. M., Romero Perdomo, F. A., & Bonilla Buitrago, R. R. (2014). Efecto de rizobacterias promotoras de crecimiento vegetal solubilizadoras de fosfato en Lactuca ativa cultivar White Boston. Revista Colombiana de Biotecnología, 16(2), 122-128. https://doi.org/10.15446/rev.colomb.biote.v16n2.41077
dc.relationSingh, I. (2018). Plant Growth Promoting Rhizobacteria (pgpr) and their various mechanisms for plant growth enhancement in stressful conditions: A review. European Journal of Biological Research, 8(4), 191-213. https://doi.org/10.5281/zenodo.1455995
dc.relationSivasithamparama, K., Dixon, K. W., & Barrett, R. L. (eds.). (2004). Microorganisms in plant conser-vation and biodiversity. Kluwer Academic Publishers. https://doi.org/10.1007/0-306-48099-9
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dc.relationSundara Rao, W. V. B., & Sinha, M. K. (1963). Phosphate dissolving micro-organisms in the soil and rhizosphere. Indian Journal of Agricultural Science, (33), 272-278.
dc.relationVierheilig, H., & Piché, Y. (2002). Signalling in arbuscular mycorrhiza: Facts and hypotheses. En B. S. Buslig, & J. A. Manthey (eds.), Flavonoids in cell function (serie Advances in Experimental Medi-cine and Biology, vol. 505, pp. 23-39). Springer. https://doi.org/10.1007/978-1-4757-5235-9_3
dc.relationimal, S. R., Singh, J. S., Arora, N. K., & Singh, S. (2017). Soil-plant-microbe interactions in stres-sed agriculture management: A review. Pedosphere, 27(2), 177-192. https://doi.org/10.1016/S1002-0160(17)60309-6
dc.relationVitousek, P. M., Menge, D. N. L., Reed, S. C., & Cleveland, C. C. (2013). Biological nitrogen fixation: Rates, patterns and ecological controls in terrestrial ecosystems. Philosophical Transactions of the Ro-yal Society B: Biological Sciences, 368(1.621). https://doi.org/10.1098/rstb.2013.0119
dc.relationWatanabe, F. S., & Olsen, S. R. (1965). Test of an ascorbic acid method for determining phosphorus in water and NaHCO3 extracts from soil. Soil Science Society of America Journal, 29(6), 677-678. https://doi.org/10.2136/sssaj1965.03615995002900060025x
dc.relationWhite, P. (2009). Efficiency of soil and fertilizer phosphorus use: Reconciling changing concepts of soil phosphorus behaviour with agronomic information. By J. K. Syers, A. E. Johnston and D. Curtin. Rome: Food and Agricultural Organization of the United Nations (2008), pp. 108, US$49.00. isbn 978-92-5-105929-6. Experimental Agriculture, 45(1). https://doi.org/10.1017/S0014479708007138
dc.relationZhang, X., Chen, B., & Ohtomo, R. (2014). Mycorrhizal effects on growth, P uptake and Cd tolerance of the host plant vary among different am fungal species. Soil Science and Plant Nutrition, 61(2), 359-368. https://doi.org/10.1080/00380768.2014.985578
dc.relation[Conservación y manejo de la diversidad microbiana en los bancos de germoplasma para la alimentación y la agricultura en Colombia](http://hdl.handle.net/20.500.12324/36935)
dc.rightsAttribution-NonCommercial-NoDerivatives 4.0 International
dc.rightshttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
dc.subjectGenética y mejoramiento animal - L10
dc.subjectBanco de germoplasma
dc.subjectMicroorganismos
dc.subjectActividad biológica en el suelo
dc.subjectCepas
dc.subjectTransversal
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_35302
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_4807
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_9264
dc.subjecthttp://aims.fao.org/aos/agrovoc/c_ae97fbc0
dc.thumbnailhttps://repository.agrosavia.co/bitstreams/9a2d5f40-ec44-4516-ba8a-67c872c12dd4/download
dc.titleColección de Microorganismos con Interés en Biofertilizantes (CMIB)
dc.typeCapítulo

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